Estudio de la resistencia a Ceratocystis fimbriata Ellis y Halst., en híbridos y clones de cacao (Theobroma cacao L.), utilizando dos métodos de evaluación
Se hizo una comparación entre dos métodos previamente publicados para evaluación de grados de resistencia del cacao a Ceratocystis fimbriata (causa del "mal de machete") con el propósito de seleccionar el método más confiable. En uno de los métodos (Delgado y Echandi) se usan secciones de ramas laterales y se dividen longitudinalmente. La parte interna de los mismos se inoculan con 0,1 ml de una suspensión acuosa de esporas de C. fimbriata (15.000/ml), realizando las lecturas de peritecios al cuarto día de la inoculación. El otro método (Ruíz) utiliza ramillas de cacao que tengan un par de hojas aparentamente sanas, las cuales se inoculan con una porción de cultivo del hongo, en una pequeña incisión practicada cerca de la base de la ramilla. Después de cinco días, se evalúa el grado de clorosis desarrollada en las hojas infectadas, midiéndose la cantidad de clorofila destruída por medio de un espectrofotómetro. Usando ambos métodos con seis clones de cacao de reacción conocida a C. fimbriata en el campo (2 resistentes, 2 intermedios y 2 susceptibles), se determinó que el método de Delgado y Echandi produjo significativamente menor variabilidad en los resultados que el método de Ruíz. Se examinaron modificaciones del método de Delgado y Echandi en un intento por reducir aún más la variabilidad en los resultados. La lectura del número de peritecios cuatro días después de la inoculación, produjo resultados más uniformes que los obtenidos después de una incubación de 1, 2 y 3 días. El uso de diferentes concentraciones de suspensiones de 5.000, 10.000 y 15.000 esporas/ml, no produjo diferencias significativas entre suspensiones de esporas. Sin embargo, se obtuvieron resultados significativamente diferentes cuando se inocularon secciones de trocitos de madera en la parte externa (corteza) con 0,1 ml de suspensión de esporas (15.000/ml) sobre un orificio hecho en la corteza con una aguja estéril de disección a una profundidad aproximada de 2 mm. Esta modificación del método de Delgado y Echandi se adoptó para evaluar la reacción a C. fimbriata de 32 híbridos y clones de la finca "La Lola". Los resultados obtenidos se compararon con los datos de infección en condiciones de campo dentro del mismo grupo de híbridos y clones. La alta correlación (r = 0,73) entre la infección natural y los resultados de la inoculación artificial muestra que el método rápido de evaluación es confiable y apropiado para medir grados de resistencia del cacao a C. fimbriata. Se desarrolló una escala arbitraria que permitió distinguir las reacciones entre cultivares resistentes y susceptibles. Por medio de este método, se establecieron como resistentes los siguientes cultivares de cacao: IMC-67, Pound-12, SPA-9, UF-613, IMC-67 x Pound-12, IMC-67 x T3BA6, IMC-67 x T3BA21, IMC-67 x ICS-1, ICS-1 x IMC-67 y SPA-9 x ICS-1.
Main Authors: | , |
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Format: | biblioteca |
Language: | | 0 |
Published: |
Turrialba, Costa Rica Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA)
1975
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Subjects: | THEOBROMA CACAO, CLONES, HIBRIDOS, CERATOCYSTIS FIMBRIATA, ENFERMEDADES FUNGOSAS, RESISTENCIA A LA ENFERMEDAD, METODOS, |
Online Access: | https://repositorio.catie.ac.cr/handle/11554/1783 |
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Summary: | Se hizo una comparación entre dos métodos previamente publicados para evaluación de grados de resistencia del cacao a Ceratocystis fimbriata (causa del "mal de machete") con el propósito de seleccionar el método más confiable. En uno de los métodos (Delgado y Echandi) se usan secciones de ramas laterales y se dividen longitudinalmente. La parte interna de los mismos se inoculan con 0,1 ml de una suspensión acuosa de esporas de C. fimbriata (15.000/ml), realizando las lecturas de peritecios al cuarto día de la inoculación. El otro método (Ruíz) utiliza ramillas de cacao que tengan un par de hojas aparentamente sanas, las cuales se inoculan con una porción de cultivo del hongo, en una pequeña incisión practicada cerca de la base de la ramilla. Después de cinco días, se evalúa el grado de clorosis desarrollada en las hojas infectadas, midiéndose la cantidad de clorofila destruída por medio de un espectrofotómetro. Usando ambos métodos con seis clones de cacao de reacción conocida a C. fimbriata en el campo (2 resistentes, 2 intermedios y 2 susceptibles), se determinó que el método de Delgado y Echandi produjo significativamente menor variabilidad en los resultados que el método de Ruíz. Se examinaron modificaciones del método de Delgado y Echandi en un intento por reducir aún más la variabilidad en los resultados. La lectura del número de peritecios cuatro días después de la inoculación, produjo resultados más uniformes que los obtenidos después de una incubación de 1, 2 y 3 días. El uso de diferentes concentraciones de suspensiones de 5.000, 10.000 y 15.000 esporas/ml, no produjo diferencias significativas entre suspensiones de esporas. Sin embargo, se obtuvieron resultados significativamente diferentes cuando se inocularon secciones de trocitos de madera en la parte externa (corteza) con 0,1 ml de suspensión de esporas (15.000/ml) sobre un orificio hecho en la corteza con una aguja estéril de disección a una profundidad aproximada de 2 mm. Esta modificación del método de Delgado y Echandi se adoptó para evaluar la reacción a C. fimbriata de 32 híbridos y clones de la finca "La Lola". Los resultados obtenidos se compararon con los datos de infección en condiciones de campo dentro del mismo grupo de híbridos y clones. La alta correlación (r = 0,73) entre la infección natural y los resultados de la inoculación artificial muestra que el método rápido de evaluación es confiable y apropiado para medir grados de resistencia del cacao a C. fimbriata. Se desarrolló una escala arbitraria que permitió distinguir las reacciones entre cultivares resistentes y susceptibles. Por medio de este método, se establecieron como resistentes los siguientes cultivares de cacao: IMC-67, Pound-12, SPA-9, UF-613, IMC-67 x Pound-12, IMC-67 x T3BA6, IMC-67 x T3BA21, IMC-67 x ICS-1, ICS-1 x IMC-67 y SPA-9 x ICS-1. |
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